الميكوبلازما هي مجموعة من البكتيريا صغيرة الحجم جداً وتفتقر إلى الجدار الخلوي، ولذلك فهي مقاومة بطبيعتها للمضادات الحيوية التي تستهدف جدار الخلية مثل البنسلينات. تنمو الميكوبلازما ببطء في أنظمة الزراعة التقليدية وغالباً ما تمر دون ملاحظة لعدم تسببها في عكارة أو تغيّرات مرئية في وسط الزرع. يمكن أن يؤثر تلوّث الميكوبلازما بشكل كبير على نمو الخلايا، والتعبير الجيني، والتمثيل الغذائي، ونتائج التجارب، مما يؤدي إلى بيانات غير موثوقة. ولهذا السبب يُعد تشخيص الميكوبلازما أحد أهم إجراءات ضبط الجودة في مختبرات زراعة الخلايا والصناعات الحيوية.
في إنتاج المستحضرات الحيوية واللقاحات، وكذلك في العمل الروتيني مع خطوط الخلايا البحثية والصناعية، يبقى خطر التلوّث الخفي بالميكوبلازما قائماً دائماً. وقد ينتقل هذا التلوّث عبر المواد الخام الحيوية، أو الأمصال، أو أوساط الزراعة، أو نتيجة ممارسات تعقيم غير كافية. لذلك فإن إجراء تشخيص الميكوبلازما بشكل دوري ومنهجي وفقاً للمعايير المرجعية الدولية مثل Ph. Eur. 2.6.7 ودستور الأدوية الأمريكي (USP) وإرشادات ICH يُعد متطلباً إلزامياً أو موصى به بشدة ضمن نظام ضبط الجودة.
للكشف عن تلوّث الميكوبلازما، توجد طرق متعددة، ولكلٍ منها استخداماته وحدوده الخاصة.
يُعد اختبار PCR من أكثر الطرق استخداماً وفعالية في تشخيص الميكوبلازما. يعتمد هذا الاختبار الجزيئي على الكشف عن الحمض النووي للميكوبلازما والأكولوبلازما باستخدام بادئات نوعية. وبفضل حساسيته ونوعيته العالية، يُعد PCR مناسباً للفحص الروتيني لمزارع الخلايا. ومع ذلك، يجب الانتباه إلى أن PCR يكشف وجود الحمض النووي فقط ولا يميّز بين الكائنات الحية وغير الحية، لذا يجب تفسير النتائج بما يتوافق مع المتطلبات التنظيمية المتعلقة بالحيوية.
تُعتبر طريقة الزرع المرجع الأساسي لإثبات حيوية الميكوبلازما، إلا أنها تستغرق وقتاً طويلاً وقد تتطلب عدة أيام إلى أسابيع للحصول على النتائج، ولذلك تُستخدم غالباً كاختبار تأكيدي بعد الكشف الجزيئي.
تُستخدم تقنيات التلوين الفلوري كطرق مساعدة ونوعية للكشف السريع عن تلوّث الميكوبلازما في مزارع الخلايا، لكنها غير كافية وحدها لاتخاذ قرارات تنظيمية.
يوفّر PCR حساسية ونوعية عاليتين في تشخيص الميكوبلازما ويستهدف الأنواع الشائعة المسؤولة عن معظم حالات التلوّث المبلغ عنها. كما يتيح زمن الاستجابة القصير اتخاذ قرارات سريعة بشأن استمرار العمل على خطوط الخلايا أو حجر الدُفعات الملوثة. إضافةً إلى ذلك، يُعد هذا الاختبار مناسباً للمراقبة الدورية لخطوط الخلايا والمواد الخام الحيوية.
تشمل العينات المقبولة لتشخيص الميكوبلازما الراشح الفوقي لمزارع الخلايا، والراسب الخلوي، وأوساط الزراعة المستهلكة أو الضابطة، وبعض المواد الخام الحيوية المختارة. يعتمد حجم العينة الموصى به على نوع المصفوفة، ويكون عادةً 1–2 مل من الراشح أو ما يقارب 10⁶–10⁷ خلية. يجب نقل العينات وحفظها في ظروف مبردة (2–8 درجات مئوية) مع تجنّب دورات التجميد والذوبان المتكررة. كما تُعد معلومات مثل مصدر خط الخلايا، والمضادات الحيوية المستخدمة، ووقت آخر تغيير للوسط ضرورية لتفسير النتائج بدقة.
تُبلّغ نتائج PCR على أنها «إيجابية» أو «سلبية» مع تضمين ضوابط الجودة المناسبة، بما في ذلك ضوابط الاستخلاص والتضخيم الداخلية. وفي حال كانت النتيجة إيجابية، قد يُوصى بإجراء اختبار زرع تأكيدي لتقييم حيوية الكائن الحي وفقاً للمتطلبات التنظيمية. يتم تحديد حد الكشف (LOD) بناءً على التحقق الداخلي للطريقة. وتشمل القيود المحتملة وجود مثبطات PCR، أو كشف حمض نووي غير حي، أو انخفاض مستوى التلوّث، مما يستدعي تكرار الاختبار وفقاً لإجراءات SOP المعتمدة.
في العمل الروتيني لمزارع الخلايا، يُوصى بإجراء تشخيص الميكوبلازما كل 4–6 أسابيع أو قبل مشاركة أو نقل خطوط الخلايا. أما في تصنيع المستحضرات الحيوية واللقاحات، فيجب تحديد تواتر الفحص وفقاً لخطة ضبط الجودة ومتطلبات الملف التنظيمي.